Методические рекомендации по сбору и определению зообентоса при гидробиологических исследованиях водотоков Дальнего Востока Ро



жүктеу 497.09 Kb.
бет1/4
Дата16.06.2018
өлшемі497.09 Kb.
түріМетодическое пособие
  1   2   3   4



Методические рекомендации по сбору и определению зообентоса при гидробиологических исследованиях водотоков Дальнего Востока России

Методическое пособие


СОДЕРЖАНИЕ

  1. Методы сбора и первичной обработки количественных проб

  2. Методы сбора количествен­ных и имагинальных проб

  3. Отряд Поденки (Ephemeroptera)

  4. Определительная таблица семейств Отряда Поденки (Ephemeroptera)

  5. Отряд Веснянки (Plecoptera)

  6. Определительная таблица семейств Отряда Веснянки (Plecoptera)

  7. Отряд Ручейники (Trichoptera)

  8. Определительная таблица семейств Отряда Ручейники (Trichoptera)

  9. Семейство Комары-звонцы

  10. Отряд Двукрылые (Diptera) Семейство Комары-Звонцы (Chironomidae)

  11. Определительная таблица Подсемейств и Триб Комаров-Звонцов

  12. Семейство Нимфомийиды (Nymphomyiidae)

  13. Семейство Деутерофлебииды (Deuterophlebiidae)

  14. Семейство Блефарицериды (Blephariceridae)


1. МЕТОДЫ СБОРА И ПЕРВИЧНОЙ ОБРАБОТКИ КОЛИЧЕСТВЕННЫХ ПРОБ

Т.М. Тиунова

1.1. Выбор станций для взятия проб. Количество и распределение станций на реке устанавливается в зависимости от конкретных задач обследования.

Число количественных проб бентоса на станции в каждый срок отбора не должно быть менее 2-х. Количество станций и соответственно проб может быть увеличено в зависимости от степени неоднородности водотока. Пробы отбираются с таким учетом, чтобы были охвачены все типы грунтов и скоро­стей течения на данном отрезке реки.

При длительном исследовании зообентоса в течение вегетационного сезо­на, года или ряда лет, проводимом с целью выяснения видового разнообразия, выявлении микробиотопов, изучении жизненных циклов и продуктивности массовых видов необходимо выбрать постоянные станции, на которых будут проводиться периодические сборы. При этом нет необходимости проводить исследования всего водотока в целом. Достаточно сконцентрировать внимание на участке реки плес-перекат. Исследования по речной фауне верховий и сред­него течения показали, что комбинация плес-перекат является структурным элементом речной системы (Takemon, 1997; Tiunova et all., 1998; Тиунова, 2001, 2003). При этом, в пределах структурной единицы плес-перекат имеет место, хорошо выраженное продольное распределение животных. Так, напри­мер, по предпочтению мест обитания виды поденок могут быть охарактеризо­ваны как виды зоны переката; виды, населяющие и перекат и плес, но в первом случае предпочитающие перекат, а во втором, предпочитающие плес и виды, равномерно населяющие и плес, и перекат {Тиунова, 2003). Это дает основание рекомендовать проводить отбор количественных проб бентоса на участке плес-перекат в трех точках: на перекате, на плесе и на сливе. Наши исследования на р. Бикин показали, что структура сообщества водных беспозвоночных перека­та, плеса и слива довольно сильно различается (Кочарина, Тиунова, 1997).

Среди огромного количества водотоков Дальнего Востока большая часть принадлежит (или принадлежала) к категории «лососевых рек». Классифика­ция таких рек в связи с их кормностью для молоди лососей приведена в моно­графии В.Я. Леванидова (1969). Все водотоки юга Дальнего Востока или их продольные участки распределяются по температурному фактору в 4 основные группы: 1 - холодноводные, 2 - умеренно холодноводные, 3 - умеренно тепло-водные, 4 - тепловодные. Каждая группа может делиться на подгруппы в зави­симости от высоты водотока или его участка над уровнем моря и от размеров 1-я группа включает водотоки кренали (лимнокрены, реокрены, родники); 2-я и 3-я - горные и малые предгорные реки или горные участки крупных рек (ритраль); 4-я группа - небольшие водотоки, целиком, протекающие по доли­не, и нижние участки крупных рек, т.е. потамаль. Каждая группа и подгруппа характеризуется присущими им количественными показателям и бентоса, осо­бенностями их группового и видового состава (Леванидов, 1969; Тиунова, 2003). Это дает основание для переноса закономерностей, полученных на де­тально изученных водотоках, на другие, обследуемые рекогносцировочно, в целях получения ориентировочных данных о кормовой базе рыб и экологиче­ском состоянии биоты. 1.2.Периодичность сборов. Сбор проб проводится главным образом в вегета­ционный период, т.е. с весны (после схода льда) до глубокой осени. При де­тальных исследованиях целесообразен интервал взятия проб 10 суток. В реках со стабильно низкими температурами, а также ранней весной и поздней осе­нью пробы можно брать реже. 1.3. Методы сбора. Изучение видового состава, распределения и количествен­ного развития донных организмов проводится различными .методами и разны ми орудиями лова. Для рек горного и предгорного типа с каменистым фунтом количественные пробы бентоса могут быть отобраны:

а) с помощью бентометра;

б) путем сбора макробентоса с отдельных валунов.

Наиболее широко в практике гидробиологических исследований использу­ется бентометр Леванидова (Леванидов, 1976). Прибор представляет собой прямоугольный каркас, имеющий площадь захвата 0.3x0.4 м2 и высоту 0.4 м (рис. 1а). Три боковые грани каркаса затянуты планктонным газом N 15, а к четвертой грани пришит мешок из планктонного газа N 23 длиной 1.5 м. Бен­тометр плотно устанавливают на грунт до глубины не более 0.3 м. Оказавшие­ся внутри бентометра камни вынимают в ведро или таз, которые затем тща­тельно отмывают, а имеющийся между камнями наполнитель взмучивают. Со­бранную в мешке фракцию переносят в ведро с водой. Листья, палки и камни, попавшие в мешок, отмывают, а полученный осадок промывают через сачок-промывалку (рис. 16). По мнению автора, форма вытянутого прямоугольника лучше обеспечивает устойчивость прибора на сильном течении, чем квадрат­ная, применявшаяся ранее B.C. Ивлевым и В.М. Ивасиком (1961). Сетки из планктонного газа обеспечивают лучшую видимость дна при сборе материала, чем сделанные из листового железа или стали. По принципу действия бенто­метр Леванидова не отличается от описанных ранее, начиная с первого типа, предложенного Нилом (Neil, 1937). Учитывая относительно большую площадь захвата бентометра, на точке отбирается, как правило, 2 пробы.

Основным недостатком бентометра Леванидова является объем проб, тре­бующий больших затрат времени на их обработку. Поэтому для отбора коли­чественных проб бентоса нами используется складной бентометр собственной конструкции (рис. 1в), который, как показали наши работы, эффективен на различных грунтах. Этот прибор состоит из двух металлических рамок, скре­пленных кольцами или трубкой. Площадь, захватываемая рамкой, - 0.25x0.25 м, достаточна, чтобы вместить участок дна с камнем такого размера, который вручную можно извлечь из воды без применения механизмов. К каркасу одной рамки пришит мешок, сделанный в местах прикрепления к прибору из крепкой ткани, а затем из газа N 23. С боков рамки скреплены треугольниками из газа и крепкой ткани. При пользовании таким бентомером сборщик заходит в воду на нужную глубину, становится против течения, опускает прибор на дно, на­ступает ногами на подвижные дужки рамки, прижимая бентометр к грунту (рис. 2). Дальнейшая работа такая же, как при использовании бентометра Леванидова. Преимущество применения такого бентометра заключается в сле­дующем: во-первых, в меньшем объеме пробы, что существенно облегчает сортировку проб бентоса; во-вторых, в меньшей его парусности на течении, что позволяет отбирать пробы на глубине до 0.8 м.

Чтобы показать, что предлагаемый нами бентометр с меньшей площадью сбора может быть использован при отборе проб на реках, была проведена ме­тодическая работа по сравнению количественного и качественного состава бентоса, собранного бентометром Леванидова, с площадью облова 0.12 м и складного бентометра, с площадью облова 0.0625м2. Так средняя биомасса бентоса, собранного в метаритрали р. Кедровая заповедника Кедровая Падь, с использованием бентометра Леванидова в весенний период 1980 г. составила 34,3 г/м2. При этом к разряду доминантов были отнесены личинки ручейника Stenopsyche marmorata, а к разряду субдоминантов Drunella aculea и Gammarus koreanus. В весенний период 1993 г. пробы на р. Кедровая отбирались склад­ным бентометром, с площадью захвата 0.0625 м2. Средняя биомасса бентоса за весенний период составила 32.1 г/м2. Так же как и в предыдущем случае в со­обществе доминировал ручейник Stenopsyche marmorata, категорию субдоминантов представляли амфипода Gammarus koreanus и ручейник Arctopsyche palpata. Таким образом, результаты, полученные с использованием бентометров, с различными площадями захвата, показали вполне сопоставимые резуль­таты (Тиунова 2001, 2003). Близкий по конструкции и с такой же площадью облова бентометр использовался ранее В.В. Богатовым для сбора бентоса на реках юга Дальнего Востока (Богатое, 1994).

Отбор проб путем сбора макробентоса с отдельных валунов по методу Шредера-Жадина недобирают некоторой части бентоса за счет инфауны, оби­тающей в грунте под основанием валуна, но дает реальное представление о величине биомассы бентоса на участках рек, дно которых почти полностью образовано валунами (Леванидова и др., 1989). Для учета бентоса по методу Шредера-Жадина, проводят сбор камней на участке реки, каждый из которых вынимают из воды в сачок и помещают в ведро или таз. При работе сборщик становится лицом против течения, подносит сачок к камню, затем одной рукой приподнимает камень, а другой подносит сачок под камень, таким образом,

изымая его из воды с меньшими потерями животных. Камень тщательно отмывается в ведре или тазу. Животных фильтруют через сачок и фиксируют 4% формалином. Для пересчета собранных животных на определенную пло­щадь, необходимо учитывать площадь проекции камней. Для этого камень укладывают на плотную бумагу так же, как он лежал на грунте, и обводят его карандашом. Затем проекция камня вырезается и взвешивается. Зная вес i см2 применяемой бумаги, определяется площадь проекции камня и проводится расчет количества собранных организмов на 1 м2 площади дна.

При сопоставлении количественного и качественного состава бентоса, со­бранного с помощью бентометра и методом Шредера-Жадина на одной из мо­дельных рек, получены весьма близкие величины среднегодовой биомассы: 19.1 и 18.0 г/м2, соответственно (Леванидов, 1977).

Количественные пробы бентоса на крупных реках проводят дночерпателями различных конструкций и разной площадью захвата. Обычно используется стандартная модель дночерпателя Петерсена, имеющего площадь захвата 0,025 м2. На каждой точке отбирается не менее 2-х проб. При работе на катере спуск и подъем прибора проводится вручную. После захвата дночерпателем грунта прибор поднимают, помещают в таз, в который затем освобождают пробу. При взятии проб на плотных песчаных и галечных грунтах используют штанговые дночерпатели Заболоцкого или Мордухай-Болтовского. Площадь захвата этих приборов составляет 0,01 м2. В каждой точке при работе со штанговыми дночерпателями отбирается по четыре пробы.

Пробы, собранные дночерпателем, перед фиксацией, как правило, отмучи­вают порциями в ведре или тазу. Для этого часть пробы помещают в ведро или таз, наполняя его на 1/3 водой и вращательными движениями взмучивают. Взмученную фракцию сливают в сачок-промывалку. Процесс отмучивания повторяется до тех пор, пока вода, которой промывают пробу, не становится прозрачной.

1.4. Методы обработки. Камеральная обработка собранных количественны; проб проводится, как правило, в лаборатории. Перед разборкой формалин аккуратно сливается через газ, а проба заливается водой. Фракцию в емкости перед разборкой взбалтывают и наливают тонким слоем в чашку Петри. Разборка производится под микроскопом МБС: под увеличением в 8 и 16 раз. Животных выбирают тонким хирургическим пинцетом и распределяют по видан или группам. В каждой группе просчитывается общее число животных. После этого полученные данные суммируются и, тем самым, определяется численность всех организмов в пробе. Затем производится перерасчет на один квадратный метр площади дна реки.

Биомасса отдельных групп бентоса определяется взвешиванием а торзионных весах после обсушивания на фильтровальной бумаге до исчезновения влажных пятен на бумаге. Личинки ручейников взвешиваются без домиков (домик сохраняется вместе с личинкой). Общая биомасса организмов, обнаруженных в пробе, определяется суммированием а пересчитывается на 1 м площади дна.


РЕКОМЕНДУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА

Богатов В.В. Экология речных сообществ российского Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 1994. 218 с.

ИвлевВ.С, Ивасик В.М. Материалы по биологии горных рек советского Закарпатья//Труды Всесоюзн. гидробиол. о-ва. М., 1961. Т. 11. С. 171-188.

Кочарина С.Л., Тиунова Т.М. Структура сообществ донных беспозвоноч ных реки Бикин // Экосистемы бассейна реки Бикин. Человек, среда, управле­ние. Владивосток: ДВО РАН. 1997. С.Пб-125.

Леванидов В. Я. Воспроизводство амурских лососей и кормовая база их молоди в притоках Амура // Изв. Тихоокеан, НИИ рыбн. хоз. И океанографии. Владивосток. 1969. Т. 67.242 с.

Леванидов В. Я. Биомасса и структура донных биоценозов малых водото­ков Чукотского полуострова // Пресноводная фауна Чукотского полуострова. Владивосток. 1976. С. 104-122.

Леванидов В. Я. Биомасса и структура донных биоценозов реки Кедровой // Пресноводная фауна заповедника «Кедровая падь». Тр. Биол.-почв. Ин-та ДВНЦ АН СССР. 1977. Т. 45 (148). С. 126-159.

Леванидова И. М., Лукьянченко Т. И„ Тесленко В. А., Макарченко М. А., Семенченко А. Ю. Экологические исследования лососевых рек Дальнего Вос­тока СССР // Систематика и экология речных организмов. Владивосток: ДВО АН СССР. 1989. С. 74-1 П.

Тиунова Т.М. Современное состояние и перспективы изучения экосистем лососевых рек юга российского Дальнего Востока // Чтения памяти Владимера Яковлевича Леванидова. Вып.1. Владивосток; Даяьнаука,2001. С.25-30.

Тиунова Т.М. Поденки юга Дальнего Востока (фауна, биология, функцио­нальная экология). Автореферат диссертации на соискание ученой степени докт. Биол. наук. Владивосток, 2003.47с.

Neil R.M. The food and feeding of the brown trout (Salmo trutta L.) in relation to the organic environment // Trans, of Royal Soc. of Edinburgh. 1937. Vol. 59. P. 481-520.

Takemon Y. Management of biodiversity in aquatic ecosystems: dynamic as­pects of habitat complexity in stream ecosystems // Biodiversity: an ecological per­spective. N. Y. Inc.: Springer-Verlag, 1997. P. 259-275.

Tiunova T.M., Teslenko V.A., Kocharina S.L., Medvedeva L.A. Long-term re­search of the small salmon rivers of the Far East of Russia // Proceedings of the 2nd East Asia-Pacific regional conference on long-term ecological research, 3-5 March 1997, National Institute for Environmental Studies, Tsukuba, Japan, 1998. P. 39-46.

2. МЕТОДЫ СБОРА КАЧЕСТВЕННЫХ И ИМАГИНАЛЬНЫХ ПРОБ

Т.М. Тиунова, Е.А. Макарченко, В.А. Тесленко
2.1 Методы сбора.

Для выявления видового разнообразия водотока необходи­мо дополнительно с количественными пробами проводить отбор качественных и имагинальных материалов.

Отбор качественных проб осуществляется с помощью стандартных гидро­биологических орудий: сачков, скребков, дрифтовых ловушек, выбор которых зависит от размера водотока, его глубины и скорости течения. Сбор имагинального материала проводится метом кошения прибрежной растительности и с помощью световых ловушек.

Большинство личинок амфибиотических насекомых населяют прибрежную зону водотоков и доступны для сбора с берега. Для этого достаточно иметь сачок из материи, хорошо фильтрующей воду. Обычно для этой цели используется мельничный газ N 15-32. Обод и палка сачка должны быть крепкими, не гнущимися. Обод (диаметром около 25 см) обшивается полосой плотной ткани, шириной 10-15 см. К этой полосе пришивают колпак сачка из фильтрующей ткани. Колпак шьется как шапка, из трех или четырех лопастей, чтобы дно сачка было широкое, закругленное. Для отбора проб в водотоках наиболее удобен сачок треугольной формы.

Сбор в водоемах и реках со слабым течением проводится или среди зарослей водной растительности, или зачерпывают ил, промывая его в том же сачке до тех пор, пока вода вокруг сачка перестанет мутиться. Личинок из песка необходимо добывать отмучиванием. Порцию песка, добытую сачком или другим орудием сбора, помещают в ведро или таз и заливают водой. Песок сильно взмучивают рукой или вращательными движениями сосуда и вскоре после этого сливают муть с песка в сачок. При взмучивании песка его обитатели некоторое время удерживаются в воде и попадают в сачок.

Растения, крупный детрит и т.п., собранные сачком, помещают в широкогорлую банку или полиэтиленовый пакет. Если сортировка проводится на месте, то проба заливается водой, если в лаборатории, то фиксируется. Для этого материал из сачка или банки перекладывают небольшими порциями в белую ванночку или тарелку, заливают водой и пинцетом или пипеткой отбирают личинок.

Личинок, живущих в моховых и водорослевых обрастаниях камней, собирают путем выполаскивания мха и водорослей в тазу с последующей промывкой отмытых частиц в сачке. Необходимо обращать особое внимание на биотопы из мокрого мха по берегам родников и горных ручьев.

В водотоках с каменистым и гравийно-галечниковым фунтами, высокой скоростью течения воды производится отбор проб методом «лягания», когда сачок устанавливается на стрежне реки и взмучивается грунт выше по течению. Поднятие и взмучивание грунта лучше всего делать ногами, имитируя лягание лошади или танец чарльстон. После сноса организмов вместе с листвой, грунтом и т.п. в сачок, проба отмывается и сортируется по группам. Хорошие результаты при сборе амфибионтов дает смыв с камней, которые вынимаются из воды, помещаются в таз, где с его поверхности счищаются все организмы вместе с перифитоном водорослей. Во время этой процедуры следует обращать внимание на трещины в камне, так как в них могут находиться домики-убежища из мелких песчинок личинок хирономид некоторых видов Diamesinae и Orthocladiinae и других двукрылых. На скалистых грунтах при сборе личинок может быть использован сачок-скребок.

Сбор животных, обитающих глубже, чем позволяет работать ручка сачка, осуществляется при помощи драги или малой модели дночерпателей Петерсена или Экмана-Берджа. Отлов беспозвоночных в глубоких равнинных реках производится дрифтовыми ловушками, установленными на тросе, натянутом поперек реки в поверхностном или придонном горизонте.

Хорошими коллекторами беспозвоночных являются бентосоядные рыбы. В их желудках часто встречаются редкие виды, которые невозможно добыть ни одним пробоотборником.

Качественные пробы бентоса фиксируют 75%-ым этанолом или 4%-ым раствором формальдегида. Имагинальные сборы фиксируются этанолом или жидкостью Удеманса.

Материал, собранный и фиксированный для любой цели, должен быть снабжен этикеткой с обязательным указанием даты, биотопа, места сбора, географического или административного района, фамилии сборщика.


2.2. Некоторые особенности сбора и фиксации личинок амфибиотических на­секомых.

Поденки. Имаго и субимаго поденок хранят только в 75 %-ом этаноле, можно с небольшой добавкой глицерина. Для поденок очень важно, чтобы ем­кость, в которую помещаются животные, была заполнена фиксатором практи­чески до верха. Это связано с тем, что у личинок часто осыпаются жаберные листки, по которым иногда идет определение, а у имаго передние ноги. Осо­бую ценность при сборе поденок имеют экземпляры, выведенные из зрелых личинок, с сохранением личиночной и субимагинальной шкурок. Для этого отлавливают зрелых нимф с темными крыловыми чехликами. Это указывает на их готовность к переходу в крылатую фазу. Отловленных нимф отсаживают в выводные садки, которые представляют собой цилиндрические каркасы, обтя­нутые мельничным газом. Садок устанавливается в водоеме таким образом, что его верхняя часть находится над водой. Вылетевшее субимаго отсаживает­ся в другой меньший садок, где оно в течение 12-48 часов еще раз линяет. Сад­ки с субимаго помещают в затененное прохладное место.

Веснянки. Для идентификации лучше всего использовать зрелых личино с хорошо развитыми крыловыми чехликами. Для выведения имаго из личинок: зрелых нимф отлавливают и помещают в садки, различной конструкции. В садках обязательно должен присутствовать влажный субстрат в виде мха или других компонентов. Садки помещают в прохладное место (в полевых услови­ях в тень) или холодильник.

Хирономиды. Собранных тем или иным способом личинок хирономид или фиксируются, или выращивают для получения комаров. Считается, что для таксономического изучения личинок хирономид, лучшим фиксатором служит горячий 70%-й этиловый спирт. В случае предполагаемого кариологического анализа личинок фиксируют в смеси" этанол – ледяная уксусная кислота (3:1) и хранят в холодильнике. Для этой цели желательно использовать личинок конца IV возраста, которых легко можно распознать по слегка вздувшимся грудным сегментам. Концентрация этилового спирта должна быть не ниже 96% Можно также использовать метиловый спирт. Для личинок подсемейств Podonominae, Diamesinae, Prodiamesinae и Orthocladiinae очень важно использовать смесь этанол-ледяной уксусной кислоты, приготовленную за несколько минут до фиксации и в первый час после фиксации желательно сменить раствор не менее 5 раз на свежеприготов­ленный. Желательно также в течение суток поменять раствор 2-3 раза. По возможности перед фиксацией личинок выдержать около 30 минут в чашке Петри или другом сосуде. Затем каждую личинку быстро обсушить на фильтровальной бумаге и поместить в пузырек со смесью этанол-ледяная уксусная кислота. Оптимальное количество личинок среднего размера в пузырьке объемом около 12 мл - 5-6.

Для точного определения вида личинок хирономид часто необходимо выведение из них взрослого насекомого, желательно самца (по самкам определить видовую принадлежность большинства подсемейств в настоящее время нельзя).


2.3 Изготовление препаратов.

При определении личинок поденок, весня­нок и ручейников иногда необходимо изготовление временных препаратов.

Хорошо заточенными иглами отчленяются ротовые части, хвостовые нити пр. После этого они вывариваются 2-3 минуты в 10%- ном растворе едкого калия или выдерживаются в нем 1-2 суток до полного растворения мышц, за тем промываются в дистиллированной воде и монтируются на предметном стекле в капле воды или глицерина. В постоянном препарате вместо глицерина используется жидкость Фора-Берлезе. Постоянный препарат закрывают покровным стеклом, края которого окантовывают бесцветным лаком для ногтей.

При определении личинок хирономид необходимо изготовить временный или постоянный препарат на предметном стекле, где хорошо должны быть видны морфологические структуры, имеющие значение в диагностике. Для: изготовления препарата личинки желательно использовать несколько экземпляров одного вида. Один экземпляр уложить спиной вверх, чтобы можно было рассмотреть окраску фронтального и щечных склеритов головы,1 распределение мелких шипиков на сегментах брюшка, строение подставок прианальных кисточек и задних подталкивателей. Второй экземпляр следует смонтировать на боку, чтобы было видно положение глаз, строение антенны, передних подталкивателей и заднего конца тела. У третьего экземпляра используется только голова. От нее отчленяются тонкими препаровальными иглами и укладываются под отдельное покровное стекло верхняя губа мандибулы, максиллы, антенны, ментум, гипофаринкс. Нередко в определени личинок важно знать окраску гулярного и затылочного склеритов, а также ширину последнего. Для этого монтируется целая голова (ментумом вверх) предварительно вываренная в 5-10%-ном растворе едкого калия и отмытая дистиллированной или кипяченой воде.

Когда производится массовое определение личинок из гидробиологических проб, можно делать временный препарат целой личинки в глицерине, или называемый давленый препарат головы. При этом голова, помещенная в каплю глицерина ментумом вверх, немного раздавливается покровным стеклом, таком препарате обычно неплохо видны части головы, имеющие большое значение в диагностике личинок. Для таксономического изучения и длительного хранения личинок хирономид следует готовить постоянные препараты, заделывая части головы и тела в жидкость Фора-Берлезе, канадский бальзам, эупараль или желатин-глицерин. Наиболее удобна для постоянного препарата жидкость Фора-Берлезе, так как в нее можно заключать части личинок, фиксированных как спиртом, так и формалином без специальной обработки или промывки.

Жидкость Фора-Берлезе готовится следующим образом. Берутся по массе: вода дистиллированная - 50, хлоралгидрат - 200, глицерин - 20, сухой гуммиарабик - 30 частей. Гуммиарабик растворяют в воде, затем добавляют глицерин и хлоралгидрат. Эту смесь нагревают в банке с притертой пробкой на водяной бане до полного растворения, после чего фильтруют через стекловату. Изготовленные препараты окантовывают бесцветным лаком. Препараты лучше хранить в горизонтальном положения на планшетах, которые помещаются в картонные коробки.



Достарыңызбен бөлісу:
  1   2   3   4


©kzref.org 2017
әкімшілігінің қараңыз

    Басты бет